Jesteś tutaj

dr hab. Małgorzata Dmitryjuk

Imię i nazwisko: dr hab. Małgorzata Dmitryjuk, prof. UWM

Stanowisko: profesor uczelni

Email: m.dmit@uwm.edu.pl

Telefon (do pokoju): 89 523 37 20

Konsultacje: poniedziałek, 13:30 – 15:00

Pokój: 321

 

 

 

 

 

 

Zainteresowania naukowe :

  1. Metabolizm węglowodanowy pasożytniczych nicieni (metabolizm glikogenu (zawartość glikogenu i aktywność fosforylazy glikogenowej) i trehalozy: zawartość trehalozy, aktywność trehalazy, fosforylazy trehalozy, syntazy i fosfatazy trehalozo-6-fosforanu, ekspresja genów kodujących metabolizm weglowodanów);
  2. Metaboliczne zależności w układzie pasożyt-żywiciel złożonym z pasożytniczego roztocza Varroa destructor  i pszczoły miodnej Apis mellifera  (metabolizm węglowodanowy, białek i lipidów);
  3. Mechanizm działania leków antyhelmintycznych – wpływ na metabolizm pasożytów, poszukiwanie nowych miejsc uchwytu leków przeciw-pasożytniczych.
  4. Diagnostyka molekularna patogenów przenoszonych przez kleszcze oraz chorób zoonotycznych (kryptosporydioza i giardioza).

 

Prace dyplomowe i rozprawy:

Habilitacja

,,Biochemiczno-genetyczna charakterystyka szlaku syntezy trehalozy u pasożytniczego nicienia Ascaris suum”

Stopień DOKTORA HABILITOWANEGO W DZIEDZINIE NAUK BIOLOGICZNYCH W DYSCYPLINIE BIOLOGIA, SPECJALNOŚĆ PARAZYTOLOGIA nadany uchwałą Rady Wydziału Biologii i Biotechnologii Uniwersytetu Warmińsko-Mazurskiego w Olsztynie z dnia 17 grudnia 2015 r.

Rozprawa doktorska

,,Enzymy katabolizmu trehalozy Ascaris suum Goeze, 1782 – występowanie i właściwości” Promotor: prof. dr hab. Krystyna Żółtowska, Katedra Biochemii, Wydział Biologii, Uniwersytet Warmińsko-Mazurski w Olsztynie

Tytuł DOKTORA NAUK BIOLOGICZNYCH W ZAKRESIE BIOLOGII nadany uchwałą Rady Wydziału Biologii Uniwersytetu Warmińsko-Mazurskiego z dnia 24 czerwca 2002 r.

Praca magisterska

,,Przeżywalność larw Ascaris suum na podłożach wzbogaconych hydrolizatem kazeiny” Promotor: prof. dr hab. Zbigniew Jabłonowski, Katedra Biologii Ogólnej, Instytut Biologii, Wydział Matematyczno-Przyrodniczy, Wyższa Szkoła Pedagogiczna w Olsztynie;

Tytuł MAGISTERA NA KIERUNKU: BIOLOGIA, studia wyższe magisterskie (5 letnie), stacjonarne, na Wydziale Matematyczno-Przyrodniczym Wyższej Szkoły Pedagogicznej w Olsztynie, w dniu 30 czerwca 1994 r.

 

Aktualny plan badawczy:

1. Identyfikacja patogenów z rodzaju Borrelia, Anaplasma, Rickettsia i Babesia w kleszczach izolowanych z psów i zwierzyny łownej  na terenach północno-wschodniej Polski.

2. Potencjalny wpływ patogenów na ekspresję genów defesyn u kleszczy.

3. Identyfikacja molekularna Candidatus Neoehrlichia mikurensis i Borrelia burgdorferi sensu lato w kleszczach Ixodes ricinus z terenów miejskich i naturalnych obszarów leśnych północno-wschodniej Polski.

 

Wykaz najważniejszych publikacji:

1. Cichocka J.M., Bielecki A., Świątek P., Jabłońska-Barna I.,. Kobak J, Hildebrand J., Dmitryjuk M., Strużyński W., Rost-Roszkowska M.. 2021. The activity of hydrolytic enzymes in the digestive system of Acanthobdellida, Branchiobdellida and Hirudinida (Annelida, Clitellata) – considerations on similarity and phylogeny. The European Zoological Journal 88(1): 26–43.
DOI:10.1080/24750263.2020.1851402 (IF=1,656)

2. Kubiak K., Szczotko M., Dmitryjuk M. 2021. Borrelia miyamotoi—an emerging human tick-borne pathogen in Europe. Microorganisms 9, 154. DOI:10.3390/microorganisms9010154 (IF=4,152)

3. Dmitryjuk M., Szczotko M., Kubiak K., Trojanowicz R., Parashchyn Z., Khomitska H., Lubenets V. 2020 S-methyl-(2-methoxycarbonylamino-benzimidazole-5)thiosulfonate as a potential antiparasitic agent – its action on the development of Ascaris suum eggs in vitro. Pharmaceuticals 13:332. DOI:10.3390/ph13110332.(IF=4,286)

4. Michalski M.M, Kubiak K., Szczotko M., Chajęcka M., Dmitryjuk M. 2020. Molecular detection of Borrelia burgdorferi sensu lato and Anaplasma phagocytophilum in ticks collected from dogs in urban areas of north-eastern Poland. Pathogens 9, 455; DOI: 10.3390/pathogens9060455 (IF=3,018)

5. Kubiak K., Dziekońska-Rynko J., Szymańska H., Kubiak D., Dmitryjuk M., Dzika E. 2019. Questing Ixodes ricinus ticks (Acari, Ixodidae) as a vector of Borrelia burgdorferi sensu lato and Borrelia miyamotoi in urban area of north-eastern Poland. Exp. App. Acarol. 78:113-126; DOI: 10.1007/s10493-019-00379-z (IF= 1,532)

6. Łopieńska-Biernat E., Stryiński R., Dmitryjuk M., Wasilewska B. 2019. Infective larvae of Anisakis simplex (Nematoda) accumulate trehalose and glycogen in response to starvation and temperature stress. Biology Open (2019) 8, bio040014. DOI:10.1242/bio.040014 (IF= 2,029)

7. Łopieńska-Biernat E., Żółtowska K., Zaobidna E.A., Dmitryjuk M., Bąk.B.2018.Developmental changes in gene expression and enzyme activities of anabolic and catabolic enzymes for storage carbohydrates in the honeybee, Apis mellifera. Insectes Sociaux, DOI: 10.1007/s00040-018-0648-1 (IF=1,675)

8. Dmochowska-Ślęzak, K., Dmitryjuk M., Zaobidna E. and Żółtowska K. 2016.The antioxidant defense system of Varroa destructor facilitates the infestation of Apis mellifera. Journal of Apicultural Science, Volume 60, No. 1, Pages: 149-151; DOI: 10.1515/JAS-2016-0010 (IF=0,722)

9. Dmitryjuk M., Łopieńska-Biernat E. 2016. The gene expression and the activity of enzyme synthesis of trehalose during development of Ascaris suum (Nematoda) eggs. Invertebrate Reproduction and Development. Volume: 60, Issue: 2, Pages: 95-102; DOI.org/10.1080/07924259.2016.1160000 (IF=0,824)

10. Farjan M., Żółtowska K., Lipiński Z., Łopieńska-Biernat E., Dmitryjuk M. 2015. The effect of dietary vitamin C on the carbohydrate concentrations and hydrolase activity, during the development of honey bee worker brood. Journal of Apicultural Science. ISSN (Online) 2299-4831, DOI: 10.1515/jas-2015-0001, April 2015 (IF=0,571)

11. Farjan M., Łopieńska-Biernat E., Lipiński Z., Dmitryjuk M., Żółtowska K. 2014. Supplementing with witamin C the diet of honeybees (Apis mellifera carnica) parazitized with Varroa destructor: effects on antioxidative status. Parasitology, 141(6): 770-776 (IF=2,56)

12. Dmitryjuk M., Żółtowska K., Frączek R., Lipiński Z. 2014. Esterases of Varroa destructor (Acari: Varroidae), parasitic mite of the honeybee. Experimental and Applied Acaralogy, 62: 499-510 (IF=1,622)

13. Dmitryjuk M., Łopieńska-Biernat E., Zaobidna E.A. 2014. The in vitro effect of ivermectin on the activity of trehalose synthesis pathway enzymes and their mRNA expression in the muscle of adult female Ascaris suum (Nematoda). The Scientific World Journal, 2014, article ID 936560: 1-8; http://dx.doi.org/10.1155/2014/936560

14. Łopieńska–Biernat E., Dmitryjuk M., Zaobidna E., Lipiński Z., Żółtowska K. 2013. The body composition and enzymes of carbohydrate metabolism of Varroa destructor. Journal of Apiculture Science, 57(2): 93-100 (IF=0,817)

15. Frączek R.J., Żółtowska K., Lipiński Z., Dmitryjuk M. 2013. The mutual influence of proteins from Varroa destructor extracts and from honeybee haemolymph on their proteolytic activity – in vitro study. Acta Parasitologica, 58(3): 317–323 (IF=0,965)

16. Dmitryjuk M., Dopieralska M., Łopienska-Biernat, Frączek R.J. 2013. Purification and partial biochemical-genetic characterization of trehalose 6-phosphate synthase from muscles of adult female Ascaris suum. Journal of Helminthology, 87: 212-221 (IF=1,303)

17. Żółtowska K., Łopieńska-Biernat E., Borowa A., Rokicki J., Dmitryjuk M. 2012. Trehalose metabolism in Contracaecum rudolphii (Nematoda). Russian Journal of Nemathology, 20 (2), 113-118 (IF=0,472)

18. Farjan M., Dmitryjuk M.,  Lipiński Z., Łopieńska-Biernat E. and Żółtowska K. 2012. Supplementation of the honey bee diet with vitamin C: I. The effect of on antioxidative system of Apis mellifera carnica brood at different stages. Journal of Apicultural Research, 51(3): 263-270 (IF=1,926)

19. Frączek R.J., Żółtowska K., Lipiński Z., Dmitryjuk M. 2012. Proteolytic activity in the extracts and in the excretory/secretory products from Varroa destructor parasitic mite of honeybee. International Journal of Acarology, 38(2): 101-109 (IF=0,554)

20. Dmitryjuk M., Łopieńska-Biernat E., Sawczuk B. 2012. Properties of trehalose-6-phosphate phosphatase from Ascaris suum muscles – preliminary studies. Russian Journal of Nematology, 20 (1): 9-14 (IF=0,472)                     

21. Żółtowska K.,  Lipiński Z.,   Łopieńska-Biernat E.,  Farjan M., Dmitryjuk M. 2012. The activity of carbohydrate-degrading enzymes in the development of brood and newly emerged workers and drones of the Carniolan honeybee, Apis mellifera carnica. Journal of Insect Science, 12(22): 1-11 (IF=0,875)

22. Dmitryjuk M., Łopieńska-Biernat E., Farjan M. 2009. The level of sugars and synthesis of trehalose in Ascaris suum tissues. Journal of Helminthology, 83: 237-243  (IF=0,863)

23. Żółtowska, K., Lipinski Z, Dmitryjuk M. 2007. Effects of Varroa destructor on sugar levels and their respective carbohydrate hydrolase activities in honey bee drone prepupae. Journal of  Apicultural Ressearch, 46(2): 110-113 (IF=0,741)

24. Dmitryjuk M., Żółtowska K., Kubiak K., Głowińska A.  2006. Changes in trehalase activity and trehalose level during Ascaris  suum (Nematoda) embryogenesis. Helminthologia, 43(3): 130-133  (IF=0,5)                  

25. Żółtowska K., Lipiński Z., Dmitryjuk M., Myszka A. 2005. Sugar content, trehalase activity and trehalose level in drone prepupae of Apis mellifera carnica parasitized with Varroa. Journal Apicultural Science, 49(1): 61-66 (IF2019=0,48)

26. Dmitryjuk M., Żółtowska K. Łopieńska E. 2005. The properties of  trehalose hydrolysing enzymes  from tissues extracts of Ascaris suum (Nematoda). Helmintologia, 42(1): 15-20 (IF=0,48)

27. Dmitryjuk M., Żółtowska K. 2004. Trehalose catabolism enzymes in tissues of Ascaris suum (Nematoda). Helminthologia, 41(2): 63-66 (IF=0,365)

28. Dmitryjuk M., Żółtowska K. 2003. Purification and characterization of acid trehalase from muscles of Ascaris suum (Nematoda). Comparative Biochemistry and Physiology Part B, 136: 61-69 (IF=1,579)

29. Żółtowska K., Łopieńska E., Rokicki J., Dmitryjuk M. 2002. The enzymes of glycogen and trehalose catabolism from Hysterothylatium aduncum (Nematoda: Anisakidae). Folia Parasitologica, 49: 239-242 (IF=0,515)

30. Żółtowska K., Dmitryjuk M. 1998. Activity of trehalase in muscles of Ascaris suum (Nematoda). Helminthologia,  35(1): 3-6 (IF=0,397)

31. Żółtowska K., Dmitryjuk M., Szlitter M. 1998. Glycogen  phosphorylase activity in  somatic  muscle of Ascaris suum. Acta Parasitologica,  43(2): 100-102 (IF=0,41)

Projekty badawcze:

  1. Kierownik grantu i wykonawca, projekt finansowany przez Urząd Marszałkowski Województwa Warmińsko-Mazurskiego w Olsztynie: Badania monitoringowo-przesiewowe wybranej populacji kleszczy twardych z rodzaju Ixodes w kierunku zarażenia czynnikami zakaźnymi wywołującymi u ludzi boreliozę  anaplazmozę na terenie wybranych obszarów województwa warmińsko-mazurskiego (Umowa Nr 1 UWM/2018, DOŚ.11.2018, 01.09.2018 – 29.12.2018; 3 miesiące; projekt bez konkursu)
  2. Wykonawca, projekt finansowany przez MNiSW : The expression of genes encoding trehalose and glycogen metabolism in developing worker brood of honey bees infested with the mite Varroa destructor (NN308 189439, 2010-2013; 36 miesięcy)
  3. Wykonawca, projekt finansowany przez MNiSW: Proteolytic enzymes and esterases of the parasitic mite Varroa destructor (Acari: Varroidae) (NN308 169338; 2009-2012; 36 miesięcy).
  4. Kierownik grantu i główny wykonawca, projekt finansowany przez MNiSW: Biochemical and genetic characteristics of trehalose-6-phosphate synthesis in the parasitic nematode Ascaris suum (Nematoda) (2PO4C 124 29; 2005-2008; 36 miesięcy)

Konferencje:

Doniesienia naukowe na konferencjach zagranicznych:

  1. Dmitryjuk M., Chajęcka M., Szczotko M., MichalskiM.M. 2018. Preliminary studies of Borrelia burgdorferi sensu lato detection in Ixodes ricinus ticks collected from city-aglomeration Dogs. XIIIth Slovak And Czech Parasitological Days, Parasites in the Heart of Europe 2, Košice, Slovakia, Congress Hotel Centrum, May 21 – 25, 2018; Book of Abstarcts p. 41
  2. Dmitryjuk M., Dziekońska-Rynko J., Mierzejewska K. 2018.Influence of effectors on the activity of trehalose synthesis enzymes from parasitic nematode Cystidicola farionis.XIIIth Slovak And Czech Parasitological Days, Parasites in the Heart of Europe 2, Košice, Slovakia, Congress Hotel Centrum, May 21 – 25, 2018; Book of Abstarcts p. 23-24
  3. Dmitryjuk M., Szczotko M., Michalski M.M., 2017. Identification of Anaplasma phagocytophilum in Ixodes ricinus tiks removed from dogs. XVI Conference of Ukrainian Scientific Society of Parasitologists, Lviv, 18-21 September 2017, Book of Abstracts p. 91
  4. Łopieńska-Biernat E., Zaobidna E., Dmitryjuk M. 2014. Drugs on the in vitro effect of antiparasitic expression of the glycogen metabolism genes of L3 larvae of Anisakis simplex (Nematoda) V4 Parasitological Meeting ,,Parasites in the Heart of Europe”, Stará Lesná – The High Tatra Mountains, Slovakia; 25-30 maj 2014, Book of Abstracts p. 96
  5. Dmitryjuk M., Zaobidna E., Łopieńska-Biernat E. 2014. Trehalase mRNA expressionin the body of Ascaris suum. V4 Parasitological Meeting ,,Parasites in the Heart of Europe”, Stará Lesná – The High Tatra Mountains, Slovakia; 25-30 maj 2014, Book of Abstracts p. 72
  1. Dmitryjuk M., Zaobidna E., Łopieńska-Biernat E. 2014. Trehalase mRNA expression in the body of Ascaris suum. V4 Parasitological Meeting ,,Parasites in the Heart of Europe”, Stará Lesná – The High Tatra Mountains, Slovakia; 25-30 maj 2014, Book of Abstracts p. 72
  1. Łopieńska-Biernat E., Zaobidna E., Dmitryjuk M., Zółtowska K. 2013. The expression of trehalose and glycogen metabolism genes of honey bee Apis mellifera carnica induced by Varroa destructor infections. XXXIII International Apicultural Congress, Kijów, Ukraina; 29 wrzesnia-04 października 2013, Abstracts p. 346
  2. Dmitryjuk M., Żółtowska K., Lipiński Z., Frączek R. 2013. The activity of esterases from Varroa destructor extracts and excretion/secretion products. XXXIII International Apicultural Congress, Kijów, Ukraina; 29 wrzesnia-04 października 2013, Abstracts p. 355
  1. Łopieńska-Biernat E., Zaobidna E., Dmitryjuk M., Żółtowska K., Lipiński Z. 2011. The expression of trehalose metabolism genes during development of brood honey bee Apis mellifera carnica – preliminary study. P2.79. Sixth International Sympodium on Molecular Insect Science, 2-5 October, 2011; Amsterdam, The Netherlands
  1. Dmitryjuk M., Łopieńska-Biernat E. 2010. The expression of trehalose 6-phosphate synthase gene in Ascaris suum tissues. Southeastern Biology Vol. 57, Number 2:153. 71st Annual Meeting Appalachian Spring of Association of Southeastern Biologists, 7-10 April, 2010; Asheville, North Carolina, USA

 

 

Doniesienia naukowe na konferencjach o zasięgu międzynarodowym:

11. Szczotko M., DmitryjukM., Michalski M.M. 2019. Prevalence of Anaplasma phagocytophilum in hard ticks isolated from wildlife animals in the Warmia-Mazury Voivodeship. The XXV Congress of the Polish Parasitological Society, 9–12 September 2019, Warsaw, Annals of Parasitology Vol. 65, Suppl. 200

  1. Buczkowska M., Chajęcka M., Szczotko M., Dmitryjuk M., Michalski M.M. 2019. Detection and identification of Borrelia spirochaetes in hard ticks removed from deer in the Warmia-Mazury Voivodeship – preliminary studies. The XXV Congress of the Polish Parasitological Society, 9–12 September 2019, Warsaw, Annals of Parasitology Vol. 65, Suppl. 175
  2. Dmitryjuk M., Trojanowicz R, Parashchyn Zh.,Khomitska H., LubenetsV. 2019. The S-methyl-(2-methoxycarbonylaminobenzoimidasole-5) thiosulfonate as potential antiparasitic agent – action on development of Ascaris suum eggs in vitro. The XXV Congress of the Polish Parasitological Society, 9–12 September 2019, Warsaw, Annals of Parasitology Vol. 65, Suppl. 155 (oral presentation)
  3. Kubiak K., Sielawa H., Dziekońska-Rynko J., Dmitryjuk M., Dzika E., 2016. Preliminary study on the prevalence of tick-borne pathogens in host-seeking Dermacentor reticulatus (Acari: Amblyommidae) ticks from the urban area of the city of Olsztyn – Borrelia burgdorferi sensu lato complex. The XXIVth Congress of the Polish Parasitological Society, Krakow, 5-8 September 2016, Annals of Parasitology 62, str.186
  4. Dmitryjuk M., Dziekońska-Rynko J., 2016. Trehalose synthesis in Cystidicola farionis (Nematoda: Cystidicolidae): a preliminary study. The XXIVth Congress of the Polish Parasitological Society, Krakow, 5-8 September 2016, Annals of Parasitology 62, str.47
  5. Łopieńska-Biernat E., Zaobidna E.A., Dmitryjuk M. 2013. In vitro effect of antiparasitic drugs on the expression of the trehalose metabolism genes of L3 larvaeof Anisakis simplex (Nematoda). Annals of Parasitology 59, p.143. The XXIIthCongress of the Polish Parasitological Society, 4-7 September 2013, Szklarska Poręba-Piechowice
  1. Dmitryjuk M., Łopieńska-Biernat E., Zaobidna E. 2013. In-vitro effect of ivermectinon the expression of the trehalose metabolism genes of adult female Ascaris suum. Annals of Parasitology 59:138. The XXIIth Congress of the Polish Parasitological Society, 4-7 September 2013, Szklarska Poręba-Piechowice
  1. Łopieńska-Biernat E., Zaobidna E., Bąk B., Dmitryjuk M., Żółtowska K. 2012. Theexpression of glycogen metabolism genes during development of brood honey bee Apis mellifera carnica. Acta Biochemica Polonica, p.77. Polish-German Biochemical Societies Joint Meeting. Biochemistry for Health and Environment,11-14 September 2012, Poznań
  1. Dmitryjuk M., Łopieńska-Biernat E. 2010. mRNA expression of tps1 and tps2 in Ascaris suum muscles (Nematoda). XXII Zjazd Polskiego Towarzystwa Parazytologicznego, 1-3 września 2010, s.53, Puławy
  2. Dmitryjuk M., Dopieralska M., Łopieńska-Biernat E., Farjan M. 2008. Purificationand characterization of trehalose-6-phosphate synthase from muscle of Ascaris suum (Nematoda). Acta Biochemica Polonica 55, Suppl 3, p.215. Kongres Biochemii i Biologii Komórki, 7-11 września 2008, Olsztyn
  1. Łopieńska E., Dmitryjuk M., Żółtowska K., Rokicki j. 2000. Validoxylamine a inhibits the activity of trehalase in nematodes of Ascaridoidea superfamily. Acta Parasitologica, vol.45, p.186. VIII European Multicolloquium of Parasitlogy, 10-14 September 2000, Poznań
  2. Żółtowska K., Łopieńska E., Dmitryjuk M. 2000. Activity of lipolytic and proteolitic enzymes in extracts from stage III larvae of Anisakis simplex . Acta Parasitologica, vol.45, p.185.VIII European Multicolloquium of Parasitlogy, 10-14 September 2000, Poznań
  1. Łopieńska E., Żółtowska K., Dmitryjuk M. 2000. Comparision of the content of protein, glycogen and thehalose in oocytes and walls of the ovary and oviduct of Ascaris suum (Nematoda). Acta Parasitologica, vol.45, n.3 p.159. VIII European Multicolloquium of Parasitlogy, 10-14 September 2000, Poznań
  2. Łopieńska E., Żółtowska K., Dmitryjuk M. 2000. Biochemical analysis of ovaries structure of Ascaris suum ( Nematoda). Acta Biologica Cracoviensia, vol. 42, suppl. 1,p. 52. XXIV Conference on Embryology Plants – Animals – Humans, 24-26, May, Podlesice
  1. Dmitryjuk M., Żółtowska K. 1998. Properties of trehalase from muscle of Ascaris suum (Nematoda). Wiadomości Parazytologiczne 44, s.283. XVIII Zjazd Polskiego Towarzystwa Parazytologicznego, 9 –12 września 1998, Olsztyn
  1. Żółtowska K., Łopieńska E., Leszczyńska K, Dmitryjuk M. 1998. The survival Ascaris suum in medium with different concentrations of sugars. Wiadomości Parazytologiczne 44, s. 496. XVIII Zjazd Polskiego Towarzystwa Parazytologicznego, 9 –12 września 1998, Olsztyn
  2. Żółtowska K., Dmitryjuk M., Giżyńska M. 1998. The activity of trehalase in reproductive organs of Ascaris suum (Nematoda). Wiadomości Parazytologiczne 44, s.497. XVIII Zjazd Polskiego Towarzystwa Parazytologicznego, 9 –12września 1998, Olsztyn
  1. Żółtowska K., Dmirtyjuk M., Slowi E. 1998. The concentration of trehalose in tissues of Ascaris suum. Wiadomości Parazytologiczne 44, s.307. XVIII Zjazd Polskiego Towarzystwa Parazytologicznego, 9 –12 września 1998, Olsztyn.
  2. Żółtowska K., Dmitryjuk M., Białowąs K., 1998. Activity of trehalase in embrionating eggs of Ascaris suum (Nematoda). Folia Morphologica 57: 80. XXIII Konferencja Embriologiczna, 13 – 16 maja 1998, Kiekrz
  3. Żółtowska K., Dmitryjuk M., Klonowska A. 1997. The incubation of adult Ascaris suum in chemically defined mediums. X Wrocławska Konferencja Parazytologiczna, 11 -14 czerwca 1997, s.59, Karpacz
  4. Żółtowska K., Dmitryjuk M., Demianowicz W.1997. Activity of glycogen phosphorylase and level of glycogen during development of Ascaris suum (Nematoda) eggs. Acta Biologica Cracoviensia, 39, suppl. 1: 77. XXII Konferencja  Embriologiczna, 14 – 17 maja 1997, Osieczany

Doniesienia naukowe na konferencjach o zasięgu krajowym:

32. Dmitryjuk M., Michalski M.M. Szczotko M., Chajęcka M., Buczkowska M. 2019. Prewalencja Borrelia burgdorferi sensu lato i Anaplasma phagocytophilum w kleszczach twardych izolowanych z psów i zwierzyny płowej na terenie województwa warmińsko-mazurskiego – badania wstępne. Zagrożenia zdrowia publicznego - X Konferencja Naukowo-Szkoleniowa Pisz, 20-22 maja 2019, Materiały konferencyjne str. 53-56

33. Szczotko M., Dmitryjuk M., Michalski M.M. 2019. Molekularna identyfikacja Borrelia burgdorferii sensu lato i Anaplasma phagocytophilum w kleszczach Ixodes ricinus izolowanych z psów poddanych działaniu leków z grupy neonikotynoidów i pyretroidów. Zagrożenia zdrowia publicznego - X Konferencja Naukowo-Szkoleniowa Pisz, 20-22 maja 2019, Materiały konferencyjne str. 50-52

34. Dmitryjuk M., Michalski M.M., Szczotko M., Badania wstępne nad prewalencją Anaplasma phagocytophilum w kleszczach Ixodes ricinus pozyskanych z psów aglomeracji miejskiej. I Konferencja Naukowo-Szkoleniowa: Parazytozy zwierząt - aktualne zagrożenia - nowe rozwiązania terapeutycznie i profilaktyczne, Ciechanowiec, 26-29 września 2017, Materiały konferencyjne str. 26. (wystąpienie ustne)

35. Frączek R., Żółtowska K., Lipiński Z., Dmitryjuk M. 2012. Wpływ białek ekstraktu zVarroa destructor na aktywność proteolityczną hemolimfy robotnic Apis mellifera carnica; XLIX Naukowa Konferencja Pszczelarska, s.57-58, Puławy

36. Łopieńska-Biernat E., Zaobidna E.A., Dmitryjuk M., Spóz A. 2012. Ekspresja genów metabolizmu trehalozy i glikogenu u larw L3 i L4 Anisakis simplex (Nematoda). Konferencja naukowa: ,,Parazytologia – nie kończąca się opowieść”, 12 grudnia 2012, s.60, Warszawa Łopieńska E., Żółtowska K.,

37. Dmitryjuk M., Rokicki J. 2001. a- glukozydazy larw Anisakis simplex (Anisakidae: Nematoda). XXXVII Zjazd Polskiego Towarzystwa Biochemicznego, s.311, 10-14 września Toruń

  1. Dmitryjuk M., Żółtowska K., Łopieńska E. 2001. Zawartość trehalozy i aktywność enzymów katabolizmu trehalozy u Hystertothylacium aduncum Rudolphi, 1802

(Nematoda: Ascaridoidea: Anisakidae) – badania wstępne. XXXVII Zjazd Polskiego Towarzystwa Biochemicznego, s.295, 10-14 września Toruń

  1. Dmitryjuk M., Łopieńska E., Żółtowska K., Kolman R., 2000. Wpływ wyciągów z paszy na aktywność proteaz przewodu pokarmowego jesiotra syberyjskiego Acipenser baeri ( Brandt). XXXVI Zjazd Polskiego Towarzystwa Biochemicznego, s.128, Poznań
  1. Dmityjuk M., Żółtowska K., Łopieńska E., 2000. Aktywność trehalazy i fosforylazy trehalozy w tkankach Ascaris suum, Goeze 1782 (Nematoda). XXXVI Zjazd Polskiego Towarzystwa Biochemicznego, s.126, Poznań
  1. Dmitryjuk M., Żółtowska K. 1999. Metoda identyfikacji trehalazy po rozdziale elektroforetycznym białek. XXXV Zjazd Polskiego Towarzystwa Biochemicznego,13-16 września 1999, IX-31, s.165, Olsztyn
  1. Żółtowska K., Dmitryjuk M., Kruk A. 1998. Aktywność transglikozylacyjna alfaglukozydaz z wyciągów mięśniowych Ascaris suum (Nematoda). XXXIV Zjazd Polskiego Towarzystwa Biochemicznego, 15-18 września 1998, s.271, Białystok
  1. Żółtowska K., Dmitryjuk M. 1997. Aktywność trehalazy w mięśniach Ascaris suum(Nematoda). XXXIII Zjazd Polskiego Towarzystwa Biochemicznego., 9-12 września 1997, s. 16, Katowice
  1. Żółtowska K., Dmitryjuk M., Jeleń I. 1996. Zawartość glikogenu w mięśniach Ascaris suum. XXXII Zjazd Polskiego Towarzystwa Biochemicznego, 17 – 20 września 1996, XI-s. 43, Kraków

 

Współpraca i staże:

Współpraca naukowa z:

  1. Dr hab. Mirosław Mariusz Michalski, Katedra Parazytologii i Chorób Inwazyjnych Wydziału Medycyny Weterynaryjnej UWM w Olsztynie -  współpraca w ramach projektu finansowanego  przez Urząd Marszałkowski Województwa Warmińsko-Mazurskiego w Olsztynie: „Badania monitoringowo-przesiewowe wybranej populacji kleszczy twardych z rodzaju Ixodes w kierunku zarażenia czynnikami zakaźnymi wywołującymi u ludzi boreliozę i anaplazmozę na terenie wybranych obszarów województwa warmińsko-mazurskiego” (Umowa Nr 1 UWM/2018, DOŚ.11.2018)
  2. Prof. dr hab. Artur Rzeżutka, Zakład Wirusologii Żywności i Środowiska, Państwowy Instytut Weterynaryjny w Puławach – współpraca w ramach realizacji badań pt. „Badania wstępne nad rozprzestrzenieniem Cryptosporidium spp. i Giardia (Lamblia) duodenalis u dzieci z objawami biegunki”
  3. Prof. Vira Lubenets, Department of Technology of Biological Active Substances, Pharmacy and Biotechnology, Lviv, Ukraine – współpraca w ramach badań dotyczących zastosowania tiosulfonianu S-methyl-(2-carbonylamino-benzoimidazolu-5) jako potencjalnego leku przeciwpasożytniczego

Staże naukowe:

  1. Uniwersytet Medyczny w Łodzi,  luty 2011 (1 tydzień), staż metodyczny w zakresie RealTime PCR i sekwencjonowania automatycznego, opiekun stażu: Prof. Ewa Balcerczak, Laboratorium Diagnostyki Molekularnej i Farmakogenomiki.
  2. Berry College, School of Mathematical and Natural Sciences, Mount Berry, Georgia, USA, kwiecień 2010 (2 tygodnie), staż metodyczny w zakresie hodowli komórkowych, immunologii oraz biologii molekularnej i diagnostyki parazytologicznej, opiekun stażu: Prof. David Bruce Conn, Department of Biology. Staż obejmował wizytę w Centers for Disease Control and Prevention in Atlanta (CDC),  Reference and Developmental Molecular Diagnostics of Parasites at the Division of Parasitic Diseases.
  3. Instytut Rozrodu Zwierząt i Badań Żywności Polskiej Akademii Nauk w Olsztynie, maj 2003 (trzy tygodnie), staż metodyczny w zakresie wysokosprawnej chromatografii cieczowej (HPLC), opiekun stażu: Prof. Mariusz Piskuła, Katedra Chemii
    i Biodynamiki Żywności.

 

Szkolenia, kursy:

  1. A&A Biotechnology, Gdynia, kwiecień 2012, kurs metodyczny “Klonowanie molekularne i sekwencjonowanie”
  2. Uniwersytet Medyczny w Łodzi, Laboratorium Diagnostyki Molekularnej i Farmakogenomiki, listopad 2009, kurs metodyczny “Techniki molekularne 
    w diagnostyce medycznej i weterynaryjnej”
  3. Kucharczyk Techniki Elektroforetyczne, Gdańsk, luty 1997, kurs metodyczny “Techniki biologii molekularnej – metody elektroforetyczne w analizie białek”