Jesteś tutaj

dr hab. Elżbieta Łopieńska-Biernat

Imię i nazwisko: dr hab. Elżbieta Łopieńska-Biernat
Stanowisko: profesor uczelni w grupie pracowników badawczo-naukowych
Pokój: 333
E-mail: ela.lopienska@uwm.edu.pl
Tel: (89) 523 48 83
Konsultacje: wtorek, 14:00-15:30
Zainteresowania: biochemia bezkręgowców, transkryptomika, proteomica, metabolomica, parazytologia molekularna, interakcje pasożyt-żywiciel

 

 

Prace dyplomowe i rozprawy w kolejności od najnowszej do najstarszej:

  • Rozprawa habilitacyjna (2019): „Molekularna charakterystyka metabolizmu trehalozy i glikogenu stadiów larwalnych nicienia Anisakis simplex”. Tytuł doktora habilitowanego w dziedzinie nauk ścisłych i przyrodniczych, dyscyplinie nauki biologiczne, specjalność biologia molekularna i biochemia.
  • Rozprawa doktorska (2004): “Enzymy metabolizmu węglowodanowego stadiów larwalnych Anisakis simplex”. Tytuł doktora nauk biologicznych, specjalność biochemia zwierząt, nadany uchwałą Rady Wydziału Biologii UWM w Olszynie.
  • Praca magisterska (1997): „Inkubacja Ascaris suum w medium inkubacyjnym wzbogaconym maltozą I sacharozą”. Katedra Biologii Ogólnej, Wydział Matematyczno-Przyrodniczy Wyższej Szkoły Pedagogicznej w Olsztynie.
  • Studia podyplomowe (2015): Menager Projektu Badawczo-Rozwojowego, Wyższa Szkoła Bankowa w Gdańsku.
  • Tutor akademicki I0, Szkoła Tutorów Akademickich Collegium Wratislaviense, 2019.

 

 

Promotor pomocniczy rozprawy doktorskiej:

 

  1. Ewa Zaobidna (2018) “Changes in the Toll signaling pathway in the response of the honeybee Apis mellifera carnica to Varroa destructor infection”

 

Promotor prac magisterskich

2020

  1. Expression of mRNA of enzymes of oxidative metabolism of Contracaecum osculatum (Rudolphi 1802) larvae under the influence of ivermectin.
  2. mRNA expression of enzymes of oxidative metabolism of Contracaecum osculatum larvae (Rudolphi 1802) under the influence of pyrantel.
  3. Expression of mRNA of ABC transporters under the influence of drugs Contracaeucum osculatum (Rudolphi 1802).
  4. Influence of polystyrene biodegradation on the expression of genes of hydrolases of intestinal oxidative metabolism Tenebrio molitor (L.).

2019

  1. The influence of antiparasitic drugs and terpenes on the expression of acetylcholine receptors of Anisakis simplex invasive larvae

2017

  1. Expression of FGT glucose transporter genes in the development stages of L3 and L4 Anisakis simplex cultivated inmedia supplemented with saccharides

2012

  1. Aminotransferases of Osmia rufa
  2. Expression of trehalose-6-phosphate synthase (tps1) on the development of the honeybee Apis mellifera carnica.

2011

  1. Expression of the genes of trehalose and glycogen metabolism in L3 Anisakis simplex larvae.

 

Aktualny plan badawczy:

1. Anisakis simplex jako pasożyt o znaczeniu dla zdrowia publicznego: transkryptom i proteom źródłem informacji na temat molekularnych podstaw przetrwania nicieni w organizmie żywiciela.

2. Egzosomy, jako przykład komunikacji międzykomórkowej biorące udział w patogenezie pasożytniczej, molekularny mechanizm tego oddziaływania.

 3. Badanie bioaktywności leków przeciwpasożytniczych in vitro - badania transkryptomiczne, proteomiczne i metabolomiczne nicieni pasożytniczych z rodziny Anisakidae.

4. Układ pasożyt - żywiciel na przykładzie oddziaływań pszczoła miodna (Apis mellifera) i Varroa destructor.

 

 

Wykaz najważniejszych publikacji (kolejność od najnowszych do najstarszych)

Stryiński R, Mateos J, Łopieńska-Biernat E, Carrera M. Shotgun Proteomics for L3 and L4 Anisakis simplex Development Stages. Methods Molecular Biology 2021; 2259:59-75. doi: 10.1007/978-1-0716-1178-4_5. PMID: 3368770912.

Łopieńska-Biernat E, Stryiński R, Polak I, Pawlikowski B, Pawlak J, Podolska M. Effect of freezing on the metabolic status of L3 larvae of Anisakis simplex s. s. Infection, Genetics and Evolution, 2020, 82, 104312.20.

Polak I, Łopieńska-Biernat E, Stryiński R, Mateos J, Carrera M. Comparative Proteomics Analysis of Anisakis simplex s.s. - Evaluation of the Response of Invasive Larvae to Ivermectin. Genes 2020, 11(6), 710.21.

Stryiński R, Łopieńska-Biernat E. Carrera M. Proteomic Insights into the Biology of the Most Important Foodborne Parasites in Europe. Foods 2020, 9(10), 1403.22.

Łopieńska-Biernat E, Stryiński R, Paukszto Ł, Jastrzębski JP. Correlation of NHR-48 Transcriptional Modulator Expression with Selected CYP Genes’ Expression during Thiabendazole Treatment of Anisakis simplex (s.l.)?- An In Vitro Study. Pathogens 2020, 9(12), 1030.

Łopieńska-Biernat E., Paukszto Ł., Jastrzębski J.P., Makowczenko K., Stryiński R. 2019. Genes expression and in silico studies of function of trehalases, a highly dispersed Anisakis simplex s.l. specific gene family. International Journal of Biological Macromolecules, 129, 957-964.

Łopieńska-Biernat E., Stryiński R., Dmitryjuk M., Wasilewska B. 2019. Infective larvae of Anisakis simplex (Nematoda) accumulate trehalose and glycogen in response to starvation and temperature stress. Biology Open, 8, bio040014. doi:10.1242/bio.040014.

Stryiński R., Mateos J., Pascual S., González AF., Gallardo JM., Łopieńska-Biernat E., Medina I., Carrera M. 2019. Proteome profiling of L3 and L4 Anisakis simplex development stages by TMT-based quantitative proteomics. Journal of Proteomics, 201, 1-11.17.

Łopieńska-Biernat E, Paukszto Ł, Jastrzębski J, Myszczyński K, Polak I, Stryiński R. Genome-wide analysis of Anisakis simplex sensu lato: the role of carbohydrate metabolism genes in the parasite’s development. International Journal for Parasitology, 2019, 49, 933-943.

Editor: Łopieńska-Biernat E. and Stryiński R. (2019) Trehalose: Sources, Chemistry and Applications. Nova Science Publishers, Inc. Oser Avenue, NY, US 24.

Łopieńska-Biernat E., Molcan T., Paukszto Ł., Jastrzębski J.P., Myszczyński K. 2018. Modelling studies determine the mode of action of anthelmintics inhibiting in vitro trehalose-6-phosphate phosphatase (TPP) of Anisakis simplex s.l. Experimental Parasitology 184, 46-56.

Łopieńska-Biernat, E., Żółtowska, K., Zaobidna, E.A., Dmitryjuk, M., Bąk, B. 2018. Developmental changes in gene expression and enzyme activities of anabolic and catabolic enzymes for storage carbohydrates in the honeybee, Apis mellifera. Insectes Sociaux 2018,1-10.

Łopieńska-Biernat E., Sokół R., Michalczyk M., Żółtowska K., Stryiński R. 2017.  Biochemical status of feral honeybee (Apis mellifera) infested with various pathogens. Journal of Apicultural Research 2017, 56 (5), 606–615.

 

 

Projekty badawcze:

Kierownik projektu:

1. “Expression of trehalose and glycogen metabolism genes in the developing brood of worker honeybee affected by Varroa destructor” Projekt badawczy NCN, N N308 189439, 2010-2013.

Opiekun naukowy w projekcie:

 

1.“Exosome-based cross-talk between the parasite of the digestive tract, Anisakis simplex and host intestine cells – molecular mechanism of parasitic invasion” Projekt badawczy (NCN PRELUDIUM), 2020-2023.

2.“Bioactivity screening of antiparasitic drugs in vitro – transcriptomic and metabolomic studies on parasitic nematode Anisakis simplex”. Projekt badawczy (NCN PRELUDIUM), 2021-2024.

 

Wykonawca w projektach:

  1. “Anisakis simplex as a parasite of public health importance: transcripts and proteomes a source of information on the molecular basis of nematode survival in the host organism”. Projekt badawczy OPUS NCN, 2019-2022.
  2. “Molecular identification and metabolism of Anisakinae”. Projekt badawczy Polskiego Ministerstwa Nauki i Edukacji PO4C02428, 2005-2008.
  3. “Identification of species Anisakidae and their sugar metabolism”. Projekt badawczy Polskiego Komitetu Badań Naukowych (KBN) 6B04B02616. 1999-2002.

 

 

 

Współpraca i staże:

  1. University of Glasgow, Institute of Biodiversity Animal Health & Comparative Medicine, School of Veterinary Medicine, United Kingdom, “RNA interference (RNAi) of Caenorhabditis elegans to determine the function of conserved Anisakis genes” 2020
  2. Erasmus + Staff Mobility traineeship at the Spanish National Research Council (CSIC), Marine Research Institute (IIM) in Vigo, Spain (Tissue proteome analysis of L3 and L4 larvae of Anisakis simplex 2018; 2019
  3. Project SeaQual NCBiR BIOSTATEG training “Quality and safety of raw materials and fish products” MIR, Research Institute, Maritime Fishing, Gdynia, 2019
  4. Molecular cloning and expression recombined protein in system E. coli, A&A Biotechnology Gdynia, 2017

 

  1. Training in procedures and laboratory experiments on animals Olsztyn, 2017
  2. Molecular cloning and sequencing of DNA, A&A Biotechnology in Gdynia, 2016
  3. Uniwersytet Medyczny w Łodzi. Real Time PCR and sequencing automatically, 2011
  4. Danisco Biolacta Ltd. The commercialization of research and the creation of an entrepreneurial mindset by UWM-production with the participation of bee bread cultures of lactic acid bacteria and probiotic honey as a product, Poland, 2011
  5. Berry College, School of Mathematical and Natural Sciences, Mount Berry, Georgia, USA, training. The methods used in vitro cell culture, immunology and molecular biology, 2010
  6. Współpraca z Spanish National Research Council (CSIC), Marine Research Institute (IIM) in Vigo, Hiszpania
  7. Współpraca z Morskim Instytutem Rybackim, Państwowy Instytut Badawczy w Gdyni.
  8. Współpraca z Katedrą Zoologii i Dobrostanu zwierząt, Wydział Hodowli i Biologii zwierząt, Uniwersytet Rolniczy im. Hugona w Krakowie.